从C57BL/6小鼠脾细胞中富集或去除CD8+ T细胞。随后使用anti-CD8(clone: 53-6.7) Alexa Fluor® 647进行荧光染色，并圈选活细胞群进行分析。
CD8 Nanobeads, mouse（RUO）
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Product Specification
| Reactivity | Mouse |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8℃，不可冻存。 |
Background
CD8 Nanobeads旨在从淋巴器官、血液或组织中对鼠细胞毒性T细胞进行阳性选择或去除。该磁珠与CD8α链的免疫球蛋白样结构域发生反应。CD8α链与CD8β以异二聚体形式表达于表达T细胞受体（TCR）α/β和TCR γ/δ的细胞毒性T细胞以及大多数胸腺细胞上。作为两条CD8α链组成的同二聚体，CD8 抗原表达于大多数NK细胞、大部分肠上皮内淋巴细胞、部分活化的CD4+CD8+ T细胞以及无胸腺鼠的CD8+ T细胞上。
Protocol
以S Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加90 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加10 μL CD8 NanoBeads Note：细胞量增大时，所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 10 μL |
|
5 |
充分混匀，2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤，400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬5×10⁷细胞 |
重悬细胞 |
|
磁性分选 |
8 |
将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中，500μL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱，收集流出液（未标记细胞） |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次，每次500μL，待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×500 μL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分；将分选柱移出磁场，置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入1mL缓冲液，用配套柱塞快速、用力推压，洗脱磁性标记的阳性细胞 Note：如需更高纯度，换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
以L Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加90 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加10 μL CD8 NanoBeads Note：细胞量增大时，所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 10 μL |
|
5 |
充分混匀，2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每 1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤，400×g 离心7分钟，完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬5×10⁷细胞 |
重悬细胞 |
|
磁性分选 |
8 |
将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中, 3 mL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱，收集流出液（未标记细胞） |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次，每次3 mL，待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×3 mL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分；将分选柱移出磁场，置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入5mL缓冲液，用配套柱塞快速、用力推压，洗脱磁性标记的阳性细胞 Note：如需更高纯度，换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
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Validation Data
