使用CD19 Nanobeads Kit, mouse、S或L Separation Column及磁性分选器从小鼠脾脏中富集或去除CD19+细胞。随后使用Alexa Fluor® 647 anti-mouse CD19 Antibody (6D5)及Brilliant Violet 421™ anti-mouse CD3 Antibody (Clone:17A2)进行荧光染色,并圈选活细胞群进行分析。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Mouse |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8℃,不可冻存。 |
Background
Mouse CD19由Cd19基因编码,为免疫球蛋白超家族 Ⅰ 型跨膜糖蛋白,是 B 细胞谱系经典标志物。该分子自骨髓 pro-B 细胞阶段开始表达,持续表达于绝大多数成熟 B 细胞,终末分化浆细胞则下调 CD19。
Protocol
以S Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
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磁性标记 |
1 |
取小鼠脾脏,置于40 μm无菌滤网上研磨,制备脾脏单细胞悬液;裂红处理后进行细胞计数 Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
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3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
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4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD19 Nanobeads, mouse Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
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5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
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6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g 离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
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7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
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磁性分选 |
8 |
将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,500 μL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
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10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次500μL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×500 μL缓冲液 |
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11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入1mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
以L Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
取小鼠脾脏,置于40 μm无菌滤网上研磨,制备脾脏单细胞悬液;裂红处理后进行细胞计数 Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
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3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
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4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD19 Nanobeads, mouse Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
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5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
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磁性分选 |
8 |
将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,3 mL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
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10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次3 mL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×3 mL缓冲液 |
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11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
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12 |
向柱内加入5mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
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Validation Data
DLS
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