从人PBMC（人外周血单个核细胞）中富集或去除CD14+细胞。随后使用anti-CD14 (clone: 61D3) APC进行荧光染色，并圈选活细胞群进行分析。
CD14 Nanobeads, human（RUO）
CD14 Nanobeads, human（RUO）
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8℃，不可冻存。 |
Background
CD14 Nanobeads用于从脐带血或外周血单个核细胞（PBMC）以及胸水、腹水、滑液或多种组织（如脾脏和淋巴结）中对人单核细胞和巨噬细胞进行阳性选择或去除。CD14抗原属于LPS受体复合物。由于CD14缺乏胞质结构域，抗体与CD14的结合不会触发信号转导。CD14在大多数单核细胞和巨噬细胞上强表达，在中性粒细胞和一些髓系树突状细胞上弱表达。
Protocol
以S Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD14 NanoBeads Note：细胞量增大时，所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
|
5 |
充分混匀，2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤，400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
|
磁性分选 |
8 |
将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中，500μL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱，收集流出液（未标记细胞） |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次，每次500μL，待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×500 μL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分；将分选柱移出磁场，置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入1mL缓冲液，用配套柱塞快速、用力推压，洗脱磁性标记的阳性细胞 Note：如需更高纯度，换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
以L Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟，完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD14 NanoBeads Note：细胞量增大时，所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
|
5 |
充分混匀，2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每 1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤，400×g 离心7分钟，完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
|
磁性分选 |
8 |
将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中, 3 mL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱，收集流出液（未标记细胞） |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次，每次3 mL，待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×3 mL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分；将分选柱移出磁场，置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入5mL缓冲液，用配套柱塞快速、用力推压，洗脱磁性标记的阳性细胞 Note：如需更高纯度，换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
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Validation Data
