采用CD138 Nanobeads、S或L Separation Column及磁性分选器对该单细胞悬液进行CD138⁺细胞去除处理。随后使用PE Mouse Anti-Human CD138 Antibody (S-R553)(STD Cat: S0B5646)进行荧光染色,并圈选活细胞群进行分析。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8℃,不可冻存。 |
Background
CD138 NanoBeads专为从人外周血单个核细胞、骨髓或淋巴组织中分离浆细胞而研发。CD138又称多配体蛋白聚糖-1(syndecan-1),表达于正常及恶性人浆细胞表面,是鉴定浆细胞的通用标志物。CD138同时表达于内皮细胞基底外侧膜、胚胎间充质细胞、血管平滑肌细胞及神经细胞。在小鼠体内,CD138除表达于浆细胞外,还表达于骨髓中的B细胞前体细胞。
Protocol
以S Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加90 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加10 μL CD138 NanoBeads Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 10 μL |
|
5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
|
磁性分选 |
8 |
将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,500μL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次500μL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×500 μL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入1mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
以L Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
计数细胞总数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加90 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
|
4 |
每1×10⁷细胞加10 μL CD138 NanoBeads Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 10 μL |
|
5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每 1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g 离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
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磁性分选 |
8 |
将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中, 3 mL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
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10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次3 mL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×3 mL缓冲液 |
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11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
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12 |
向柱内加入5mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
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Validation Data
