采用Mouse T无柱式分选试剂盒,从小鼠脾细胞中富集T细胞。使用CD19- Alexa Fluor® 647 (SDT Cat: S0B5445)、CD3- Alexa Fluor® 488 (SDT Cat: S0B8364)荧光抗体进行染色,以活细胞(Live+)设门进行分析, 检测分选组分中T细胞的比例;流式细胞术检测结果表明,本次分选后T细胞纯度为98.4%。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Mouse |
| Stability & Storage | 避光保存于 2–8 ℃,不可冻存。 |
Background
Mouse T淋巴细胞是小鼠适应性免疫系统中最核心的效应细胞群体,是机体抵御病原体入侵、清除异常细胞、维持免疫稳态的关键力量。CD3分子是Mouse T细胞表面最具特征性的跨膜糖蛋白复合物,由γ、δ、ε、ζ四种多肽链以非共价键结合形成,与T细胞受体(TCR)构成TCR-CD3复合物——CD3分子不直接识别抗原,主要功能是将TCR识别抗原后产生的活化信号传递至细胞内,启动T细胞的活化、增殖与分化,是T细胞成熟、活化及发挥功能的必要条件,因此CD3分子常作为鉴定T细胞的特异性表面标志物。在科研实验中,获得高纯度、高活性的Mouse T细胞是开展T细胞相关研究的前提。本阴选试剂盒采用阴性分选原理,通过生物素偶联抗体特异性标记非CD3⁺T细胞(如B细胞、巨噬细胞、粒细胞等),再利用链霉亲和素纳米磁珠结合并去除非目标细胞,全程不与T细胞表面抗原结合,可最大限度保留其原始形态、表面标志物完整性及功能活性,为后续实验提供可靠的细胞材料。
Protocol
步骤 |
操作说明 |
剂量和时间 |
1 |
取小鼠脾脏,置于40 μm无菌滤网上研磨,制备脾脏单细胞悬液;进行细胞计数; Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数;脾细胞可以采用400 g离心7 min; |
制备样本 |
2 |
用100μL MagSep Separation Buffer重悬1×107细胞; Note:试剂根据样品体积等比例调整;留分选前样本检测初始Mouse T比例; |
1×107 cells/100 μL |
3 |
加入10 μL Mouse T cell Biotin Antibody Cocktail 至样品中,轻轻混匀; Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下; |
10 μL /100 μL |
4 |
Cocktail中的抗体和细胞进行孵育, 室温孵育10 min; |
室温孵育10 min |
5 |
震荡5-30 s,混匀Streptavidin beads; |
混匀5-30 s |
6 |
加5 μL Streptavidin beads至样品中; |
5 μL/100 μL |
7 |
轻柔混匀磁珠和细胞,室温孵育5min; Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3 下; 本步骤磁珠会出现沉底的情况,可以在2.5min时,轻弹混匀一下; |
室温孵育5min |
8 |
加MagSep Separation Buffer到样品中,立即放置在磁极上,防止磁珠大量沉底; |
总体积加至2.5 mL(5 mL流式管) 总体积加至7.5 mL(15 mL离心管) |
9 |
样品置于磁极上,使磁珠吸附在管壁上; |
单孔磁力架吸附(3 min) 联排磁力架吸附(5 min) |
10 |
倾斜磁力架,将样品倒入新的收集管中,收集样品; Note: 分选的细胞可采用400g离心7min,用于后续培养和分析。 |
细胞分选成功 |
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Note: 1. 0.1-1 × 10^8 cells(0.1-1mL)推荐使用5 mL单孔磁极(Starter EasyIso Separator)吸附总体积为2.5mL; 2-5 × 10^8 cells(2-5mL)推荐使用15 mL联排磁极(Starter EasyEights EasyIso Separator)吸附总体积为7.5mL; 2. 若样本活率偏低,建议使用去死细胞试剂盒去除死细胞(Dead Cell Removal Set, (RUO)#S0K0009); | ||
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Validation Data
