采用Naïve CD4 T无柱式分选试剂盒,从小鼠脾细胞中富集Naïve CD4 T细胞。使用CD4-Pacific Blue、CD44-FITC、CD62L-Alexa Fluor® 647荧光抗体进行染色,以活细胞(Live+)设门进行分析, 检测分选组分中Naïve CD4 T细胞(CD4+CD44-CD62L+)的比例;流式细胞术检测结果表明,本次分选后Naïve CD4 T细胞纯度为95.5%。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Mouse |
| Stability & Storage | 避光保存于 2–8 ℃,不可冻存。 |
Background
Mouse Naïve CD4 T 细胞指从未接触过特异性抗原、处于静息状态的成熟CD4 T细胞。它是所有效应性 CD4 T 细胞(Th1/Th2/Th17/Treg 等)的共同前体,也是研究T细胞活化、分化与功能机制的模型。通过无柱式Mouse Naïve CD4 T细胞分选试剂盒,可快速纯化获得未接触抗体的初始CD4 T细胞。该方法在分选过程中仅去除非靶细胞,而不标记或激活目标初始CD4 T细胞,能够保留细胞的天然表型与功能完整性,适用于后续的细胞培养及功能学检测。
Components
Protocol
步骤 |
操作说明 |
剂量和时间 |
1 |
取小鼠脾脏,置于40 μm无菌滤网上研磨,制备脾脏单细胞悬液;裂红处理后进行细胞计数; Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数;脾细胞可以采用400 g离心7 min; |
制备样本 |
2 |
用100μL MagSep Separation Buffer重悬1×107细胞; Note:试剂根据样品体积等比例调整;留分选前样本检测Naïve CD4比例; |
1×107 cells/100 μL |
3 |
加入10 μL Mouse Naïve CD4 T cell Biotin Antibody Cocktail 至样品中,轻轻混匀; Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下; |
10 μL /100 μL |
4 |
Cocktail中的抗体和细胞进行孵育, 室温孵育10 min; |
室温孵育10 min |
5 |
震荡5-30 s,混匀Streptavidin beads; |
混匀5-30 s |
6 |
加10 μL Streptavidin beads至样品中; |
10 μL/100 μL |
7 |
轻柔混匀磁珠和细胞,室温孵育5min; Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3 下; 本步骤磁珠会出现沉底的情况,可以在2.5min时,轻弹混匀一下; |
室温孵育5min |
8 |
加MagSep Separation Buffer到样品中,立即放置在磁极上,防止磁珠大量沉底; |
总体积加至2.5 mL(5 mL流式管) |
9 |
样品置于单孔磁极上,使磁珠吸附在管壁上; |
单孔磁力架吸附10 min |
10 |
倾斜磁力架,将样品倒入新的收集管中,收集样品; Note: 分选的细胞可采用400g离心7min,用于后续培养和分析。 |
细胞分选成功 |
Note: 0.1-1 × 108 cells(0.1-1mL)推荐使用5 mL单孔磁极(Starter EasyIso Separator)吸附总体积为2.5mL; | ||
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