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Mouse Lineage Cell Depletion Kit (Column-Based)

Mouse Lineage Cell Depletion Kit (Column-Based)

Catalog Number: S0K1020 Reactivity: Mouse Conjugation: Brand: Starter
Price:
Regular price $920 USD
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Product Details

Product Specification


Reactivity Mouse
Magnetic Bead Size 20 nm
Separation Method Column-Based
Selection Strategy Negative Selection
Stability & Storage

避光保存于 2–8 ℃,不可冻存。

Background

谱系阴性(Lin⁻)细胞是小鼠体内一类不表达任何成熟终末分化细胞表面谱系标志物的原始细胞群体,主要富集于骨髓组织,少量存在于脾脏等造血组织。该细胞群体核心包含造血干细胞(HSC)与造血祖细胞(HSPC),是造血系统中未分化、具备自我更新与多向分化潜能的原始细胞,区别于已定型、功能特化的成熟造血细胞。通过排除T细胞、B细胞、单核巨噬细胞、粒细胞、红系细胞等所有成熟造血谱系细胞后获得的纯化原始细胞群体,也是分离、研究造血干祖细胞的基础富集群体。通过免疫磁珠阴性技术,利用混合生物素化谱系抗体特异性标记所有Lin⁺成熟造血细胞,再通过链霉亲和素磁珠特异性结合标记细胞,经磁场吸附截留杂细胞;无任何标记的Lin⁻原始干祖细胞不受磁场吸附,直接流出收集;本阴性分选技术核心优势为无接触分选,目标细胞不接触抗体、磁珠,不会发生表面抗原交联、细胞活化或损伤,最大程度保留干细胞的原始干性、活性与分化潜能,远优于阳性分选,适配高要求的干细胞功能实验。

Protocol

以L Separation Column为例

步骤

操作说明

剂量和时间

细胞处理及标记

1

取小鼠骨髓,制备单细胞悬液,进行细胞计数;

Note: 小鼠骨髓需使用红细胞裂解液Red Blood Cell Lysis Buffer (不含固定剂,1X)(Cat:S0D9002)进行裂红处理; 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数;

制备样本

2

用预冷的100μL MagSep Separation Buffer(Cat:S0D3018)重悬1×107活细胞;

Note:试剂根据样品体积等比例调整;留分选前样本检测Lin-细胞比例;

1×107 cells/100 μL

3

加入10 μL Mouse Lineage Cell Depletion Biotin-Antibody Cocktail至样品中,轻轻混匀;

Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下;

10 μL/100 μL

4

Cocktail中的抗体和细胞进行孵育,2-8℃孵育10 min;

2-8℃孵育10 min

5

加入10倍细胞体积预冷的MagSep Separation Buffer洗涤细胞,400g离心7min后去上清,重悬至原体积;

400g离心7min

6

混匀Streptavidin NanoBeads,加10 μL Streptavidin NanoBeads至样品中;

10 μL/100 μL

7

轻柔混匀磁珠和细胞,2-8℃孵育5 min;

Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下;

2-8℃孵育5 min

细胞分选

8

在柱分选磁极中,装上L Separation Column,加入3 mL MagSep Separation Buffer,润洗分选柱;

润洗分选柱

9

将细胞加入到分选柱中,并用收集管收集目的细胞;

Note: 细胞体积最少为1mL,不足则用MagSep Separation Buffer补齐;随重力滴落的细胞为目的细胞;

收集目的细胞

10

分3次加入3 mL MagSep Separation Buffer,收集目的细胞;

Note: 本步骤洗脱分选柱未标记的目的细胞,提高得率。

收集目的细胞

Notes:  1. 注意分选柱的最大承载量,S Separation Column标记细胞数最大为1×107;L Separation Column最大标记细胞数为1×108;

2. 全程注意控制温度,分选Buffer全程预冷,避免室温长时间放置。


Picture

Validation Data

从小鼠骨髓细胞中富集谱系阴性(Lin⁻)干细胞 /祖细胞。使用Lineage Cocktail-BV421 (anti-mouse CD3, clone 17A2; anti-mouse Ly-6G/Ly-6C, clone RB6-8C5; anti-mouse CD11b, clone M1/70; anti-mouse CD45R/B220, clone RA3-6B2; anti-mouse TER-119/Erythroid cells, clone Ter-119)荧光抗体进行染色,以活细胞(Live+)设门进行分析, 检测分选组分中(Lin⁻)干细胞 /祖细胞比例;流式细胞术检测结果表明,本次分选纯度为88.9%。