从人外周血单个核细胞(PBMCs)中富集Human Pan B细胞,分选后细胞使用CD19-APC(Clone: HIB19)、CD43-PE(Clone: CD43-10G7)荧光抗体进行染色,以活细胞(Live⁺)设门进行分析, 检测分选组分中Pan B细胞的比例。流式细胞术检测结果表明,本次分选后CD19⁺(包含CD43⁺和CD43⁻)细胞纯度为96.73%。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Magnetic Bead Size | 20 nm |
| Separation Method | Column-Based |
| Selection Strategy | Negative Selection |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8 ℃,不可冻存。 |
Background
Human Pan B细胞是人体体液免疫应答的核心细胞群体,可分化产生特异性抗体并介导免疫记忆形成,是机体适应性免疫体系的重要组成部分,广泛参与免疫防御、免疫调节及多种免疫相关疾病的发生发展过程。Human Pan B细胞阴选试剂盒基于免疫磁珠阴性分选技术研发,规避了阳性分选存在的抗体结合标记缺陷,可特异性清除T细胞、NK细胞、单核细胞、粒细胞、血小板和红细胞等各类非目标细胞。该分选体系的抗体组分不含CD43,能够有效避免CD43阳性B细胞亚群损耗,完整保留初始B细胞、记忆性B细胞、浆细胞等多种B细胞谱系。所得高纯度Pan B细胞无外源标记、原生状态完好,最大程度保留了细胞增殖、分化及抗体分泌的生物学潜能,可充分适配各类体外功能实验,是目前科研领域分离纯化人Pan B细胞的主流工具。
Protocol
以L Separation Column为例
步骤 |
操作说明 |
剂量和时间 |
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细胞处理及标记 |
1 |
从外周血通过淋巴细胞分离液密度梯度离心,分离PBMC或直接复苏冻存的PBMC细胞,进行细胞计数; Note:推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数;PBMC可以采用400 g离心7 min; |
制备样本 |
2 |
用100 μL MagSep Separation Buffer重悬1×107细胞; Note:试剂根据样品体积等比例调整;留分选前样本检测Human Pan B细胞比例; |
1×107 cells/100 μL |
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3 |
加入10 μL Human Pan B Cell Biotin Antibody Cocktail至样品中,轻轻混匀; Note:本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下; |
10 μL/100 μL |
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4 |
Cocktail中的抗体和细胞进行孵育,室温孵育10 min; |
室温孵育10 min |
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5 |
抗体孵育结束后,加入2倍体积的MagSep Separation Buffer,400 g离心7 min,随后小心弃去上清液。加入100 μL MagSep Separation Buffer重悬1×107细胞,进行后续步骤; |
加入2倍体积buffer洗涤抗体 |
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6 |
混匀Streptavidin Beads,加12.5 μL Streptavidin Beads至样品中; |
12.5 μL/100 μL |
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7 |
轻柔混匀磁珠和细胞,室温孵育8 min; Note:本步骤混匀可以采用移液器轻轻吹匀2-3下; 磁珠孵育期间,如有细胞沉降,可以在4 min时,再次混匀一下; |
室温孵育8 min |
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细胞分选 |
8 |
在柱分选磁极中,装上L Separation Column,加入3 mL MagSep Separation Buffer,润洗分选柱; |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞加入到分选柱中,并用收集管收集目的细胞; Note:细胞体积最少为500 μL,不足则用MagSep Separation Buffer补齐;随重力滴落的细胞为目的细胞; |
收集目的细胞 |
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10 |
加入3 mL MagSep Separation Buffer,收集目的细胞; Note:本步骤洗脱分选柱未标记的目的细胞,提高得率。 |
收集目的细胞 |
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Notes:1. 注意分选柱的最大承载量,S Separation Column标记细胞数最大为1×107;L Separation Column最大标记细胞数为1×108; 2. 若样本活率偏低,建议使用去死细胞试剂盒去除死细胞(Dead Cell Removal Set, (RUO)#S0K0009)。 | |||
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Validation Data
