采用Human Neutrophil有柱式阴选试剂盒,从人新鲜血液中富集中性粒细胞。使用CD66B-Alexa Fluor® 488 (SDT Cat: S0B8109)、CD16- Alexa Fluor® 647 (SDT Cat: S0B5525)荧光抗体进行染色,以活细胞(Live+)设门进行分析, 检测分选组分中中性粒细胞的比例;流式细胞术检测结果表明,本次分选后中性粒细胞纯度为97.5%。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Magnetic Bead Size | 20 nm |
| Separation Method | Column-Based |
| Selection Strategy | Negative Selection |
| Stability & Storage | 避光保存于 2–8 ℃,不可冻存。 |
Background
人中性粒细胞是人体外周血中含量最丰富的固有免疫髓系细胞,核心表型为CD16+CD66b+,是机体抵御细菌、真菌感染的第一道防线,同时广泛参与炎症反应、免疫调节、组织损伤修复及自身免疫性疾病、肿瘤微环境调控等关键生理病理过程。高质量、高活性、高纯度的原代中性粒细胞分离,是开展细胞功能验证、炎症机制研究、药物筛选及免疫相关基础科研的核心前提。
本试剂盒基于免疫磁珠阴性分选技术开发,采用生物素化抗体特异性标记并去除外周血中的T细胞、B细胞、NK细胞、单核细胞、嗜碱性粒细胞、及红细胞等非目标细胞,全程不标记、不触碰目标中性粒细胞。分离所得细胞可直接应用于流式细胞术检测、细胞活化与功能实验、炎症因子分泌检测、体外药物干预实验等各类下游科研场景,为免疫炎症相关机制研究提供稳定可靠的细胞分离解决方案。
Protocol
以L Separation Column为例
步骤 |
操作说明 |
剂量和时间 |
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细胞处理及标记 |
1 |
取人新鲜外周血,需使用红细胞裂解液Red Blood Cell Lysis Buffer (不含固定剂,1X)(Cat:S0D9002)进行裂红处理; 制备单细胞悬液后,进行细胞计数; Note:推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数; |
制备样本 |
2 |
用100μL MagSep Separation Buffer(Cat:S0D3018)重悬1×107细胞; Note:试剂根据样品体积等比例调整; 留分选前样本检测Human Neutrophil比例; |
1×107 cells/100 μL |
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3 |
加入10 μL Human Neutrophil Biotin Antibody Cocktail至样品中,轻轻混匀; Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下; |
10 μL/100 μL |
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4 |
Cocktail中的抗体和细胞进行孵育, 2-8℃孵育10 min; |
2-8℃孵育10 min |
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5 |
加入10倍细胞体积的MagSep Separation Buffer洗涤细胞,400g离心7min后去上清,重悬至原体积; |
400g离心7min |
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6 |
混匀Streptavidin Beads,加15 μL Streptavidin Beads至样品中; |
15 μL/100 μL |
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7 |
轻柔混匀磁珠和细胞,2-8℃孵育5 min; |
2-8℃孵育5 min |
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细胞分选 |
8 |
在柱分选磁极中,装上L Separation Column,加入 3 mL MagSep Separation Buffer,润洗分选柱; |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞加入到分选柱中,并用收集管收集目的细胞; Note: 细胞体积最少为1mL,不足则用MagSep Separation Buffer补齐;随重力滴落的细胞为目的细胞; |
收集目的细胞 |
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10 |
分3次加入3 mL MagSep Separation Buffer,收集目的细胞; Note: 本步骤洗脱分选柱未标记的目的细胞,提高得率。 |
收集目的细胞 |
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Notes: 注意分选柱的最大承载量,S Separation Column标记细胞数最大为1×107;L Separation Column最大标记细胞数为1×108; | |||
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Validation Data
