采用Human Naïve CD4 T Cell无柱式分选试剂盒,从人外周血单个核细胞(PBMCs)中富集Naïve CD4 T细胞。分选后细胞使用CD3-FITC(Clone: UCHT1)、CD4-Alexa Fluor® 647 (Clone: OKT4)、CD45RA-PE-Cy7 (Clone: HI100)、CD45RO-Pacific Blue (Clone: UCHL1)荧光抗体进行染色,以活细胞(Live⁺)设门进行分析, 检测分选组分中Naïve CD4 T细胞的比例。流式细胞术检测结果表明,本次分选后CD3⁺CD4⁺细胞中CD45RA⁺CD45RO⁻细胞纯度为92.5%。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Stability & Storage | 避光保存于 2–8 ℃,不可冻存。 |
Background
Human Naïve CD4 T细胞的免疫表型为CD3⁺CD4⁺CD45RA⁺CD45RO⁻,是人体适应性免疫系统中负责初始抗原识别与定向分化的核心辅助T细胞前体群体,也是维持免疫稳态、介导特异性应答及形成免疫记忆的关键细胞亚群。Human Naïve CD4 T细胞阴选试剂盒基于免疫磁珠阴性分选技术研发,摒弃阳性分选的抗体结合标记缺陷,通过特异性去除非目标细胞(如CD8 T细胞、NK细胞、B细胞、单核细胞、树突状细胞、粒细胞及记忆性T细胞等),获得无标记、原生状态的高纯度Naïve CD4 T细胞,完美保留细胞初始静息状态、表面分子完整性与多向分化潜能,适配体外活化增殖、亚群定向分化诱导、细胞因子分泌检测等各类功能实验,成为目前人Naïve CD4 T细胞分离的主流科研工具。
Protocol
步骤 |
操作说明 |
剂量和时间 |
1 |
从外周血通过淋巴细胞分离液密度梯度离心,分离PBMC或直接复苏冻存的PBMC细胞,进行细胞计数; Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数;PBMC可以采用400 g离心7 min; |
制备样本 |
2 |
用100 μL MagSep Separation Buffer重悬1×107细胞; Note: 试剂根据样品体积等比例调整;留分选前样本检测Human Naïve CD4 T细胞比例; |
1×107 cells/100 μL |
3 |
加入10 μL Human Naïve CD4 T Cell Biotin Antibody Cocktail至样品中,轻轻混匀。 Note: 本步骤混匀可采用移液器轻轻吹匀2-3下; |
10 μL /100 μL |
4 |
Cocktail中的抗体和细胞进行孵育,室温孵育10 min; |
室温孵育10 min |
5 |
震荡5-30 s,混匀Streptavidin beads; |
混匀5-30 s |
6 |
加15 μL Streptavidin beads至样品中; |
15 μL/100 μL |
7 |
轻柔混匀磁珠和细胞,室温孵育8 min; Note: 本步骤混匀可以采用移液器轻轻吹匀2-3 下; 本步骤中磁珠会出现沉底的情况,可以在2.5 min时,再次混匀一下; |
室温孵育8 min |
8 |
加MagSep Separation Buffer到样品中,立即放置在磁极上,防止磁珠大量沉底; |
总体积加至2.5 mL(5 mL流式管) 总体积加至7.5 mL(15 mL离心管) |
9 |
样品置于磁极上,使磁珠吸附在管壁上; |
单孔磁力架吸附(3 min) 联排磁力架吸附(5 min) |
10 |
倾斜磁力架,将样品倒入新的收集管中,收集样品; Note: 分选的细胞可采用400 g离心7 min,用于后续培养和分析。 |
细胞分选成功 |
|
Note: 1. 0.1-1 × 108 cells(0.1-1 mL)推荐使用5 mL单孔磁极(Starter EasyIso Separator)吸附总体积为2.5 mL; 2-5 ×108 cells(2-5 mL)推荐使用15 mL联排磁极(Starter EasyEights EasyIso Separator)吸附总体积为7.5 mL; 2. 若样本活率偏低,建议使用去死细胞试剂盒去除死细胞(Dead Cell Removal Set, (RUO)#S0K0009); | ||
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Validation Data
