使用CD15 Nanobeads, human、S或L Separation Column及磁性分选器从人外周血中富集或去除CD15+细胞。随后使用APC anti-human CD15 (SSEA-1) Antibody (Clone:HI98)进行荧光染色,并圈选活细胞群进行分析。
Product Details
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Product Specification
| Reactivity | Human |
| Stability & Storage | 避光保存于2–8℃,不可冻存。 |
Background
CD15 Nanobeads, human旨在从人外周血或组织单细胞悬液中阳性分选或去除 CD15 阳性细胞。CD15抗原表达于中性粒细胞、嗜酸性粒细胞以及髓系谱系的单核母细胞前体细胞,但不表达于嗜碱性粒细胞和淋巴细胞。此外,该抗原也表达于Hodgkin/Reed-Sternberg细胞。
Protocol
以S Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
人外周血裂红后计数细胞总数 Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
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3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
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4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD15 Nanobeads, human Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
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5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
|
6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g 离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
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磁性分选 |
8 |
将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,500 μL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
|
10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次500μL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×500 μL缓冲液 |
|
11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
|
12 |
向柱内加入1mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
以L Separation Column为例
步骤 |
操作方法 |
剂量 / 时间 |
|
磁性标记 |
1 |
人外周血裂红后计数细胞总数 Note: 推荐细胞采用AO/PI染色后进行计数 |
— |
2 |
细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
400×g,7 min |
|
3 |
每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬 Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整 |
重悬细胞 |
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4 |
每1×10⁷细胞加20 μL CD15 Nanobeads, human Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加 |
1×10⁷细胞加 20 μL |
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5 |
充分混匀,2–8℃避光孵育15min |
孵育15 min |
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6 |
每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g离心7分钟,完全吸弃上清 |
1×10⁷细胞加1 mL |
|
7 |
500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞 |
重悬细胞 |
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磁性分选 |
8 |
将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,3 mL缓冲液润洗分选柱 |
润洗分选柱 |
9 |
将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞) |
— |
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10 |
缓冲液洗涤柱子3次,每次3 mL,待柱内液体完全流空后再加下一次 |
3×3 mL缓冲液 |
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11 |
合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上 |
— |
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12 |
向柱内加入5mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次 |
收集目的细胞 |
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Validation Data
